sábado, 24 de noviembre de 2012

3.5.1.2 VARIABILIDAD



La evaluación de la viabilidad de los cultivos in vitro se debe realizar sistemáticamente. En condiciones de crecimiento lento, en que el periodo de trasferencia se extiendo durante meses o años, la frecuencia de evaluación de los cultivos aumenta en comparación con la evaluación que haría al material conservado bajo nitrógeno líquido, por ejemplo. Las características más importantes que se evalúan en el almacenamiento de crecimiento lento de cultivos derivados del ápice de yemas son: contaminación, senescencia de la hoja (razón hojas verdes/hojas muertas), numero de brotes verdes (para micro propagación adicional), numero de nudos viables (verdes) en relación con la longitud del tallo (verde), presencia o ausencia de raíces y ocurrencia de callo.


Bibliografia
  1. http://webapp.ciat.cgiar.org/biotechnology/cultivo_tejidos/capitulo31.pdf

3.5.1.1 REGENERACIÓN



La regeneración del plantas enteras basadas en los sistemas de cultivo de células es, a menudo, el paso que limita la aplicación de técnicas de cultivo in vitro a especies vegetales que no se pueden propagar mediante meristemos preformados. A pesar de la capacidad que tienen para iniciar callo diversos tejidos y órganos de muchas especies cultivadas, la regeneración reproducible de plantas enteras sigue siendo problemática. La regeneración adventicia mediante la embriogénesis somática es muy deseable, ya que el proceso ofrece altas tasas de multiplicación y produce propágalos que poseen ejes de raíz y de yema. Los embriones somáticos pueden desarrollarse de células únicas y se pueden recuperar plantas con genotipos más estables.

Bibliografia
  • http://webapp.ciat.cgiar.org/biotechnology/cultivo_tejidos/capitulo31.pdf

3.5 CONSERVACIÓN IN VITRO

3.5.1 ASPECTOS IMPORTANTES EN LA CONSERVACIÓN IN VITRO


La conservación in vitro tiene que considerarse como parte de la estrategia general de conservación de una especie vegetal; es más bien un auxiliar valioso y un suplemento de la conservación de los recursos genéticos. Solo ocasionalmente, el almacenamiento in vitro sería la única estrategia para conservar una especie dada. Para algunos frutales tropicales como el cacao (Theobroma), la estrategia principal de conservación estaría probablemente en los bancos genéticos in vitro que se utilizan las técnicas in vitro para evaluar la variabilidad genética de la especie, y para la colección e intercambio de esta. Los cultivos de raíces y tubérculos, como papa, yuca y batata (Ipomoea), se almacenarían como semillas durante cortos periodos, de modo que, para ellos, los métodos in vitro serian complementarios para la conservación de genotipos específicos y para el traslado internacional de clones.

Bibliografia
  1. http://webapp.ciat.cgiar.org/biotechnology/cultivo_tejidos/capitulo31.pdf

3.4.4 APLICACIÓN AGRONÓMICA



Aplicaciones a corto  plazo (hasta cinco años): propagaci6n vegetativa,  obtenci6n de plantas libres  de virus, intercambio  y almacenamiento de germoplasma,  rescate de embriones, cultivo  de anteras y producci6n de haploides, variaci6n somaclonal, metabolitos secundarios, hibridaci6n somática y híbridos.

Aplicaciones a mediano plazo (cinco a 10 años): Transferencia, integraci6n y expresi6n de genes, que controlan características  simples, a cultivos  de importancia econ6mica  (ingeniería genética para caracteres monogenicos).

Aplicaciones a largo  plazo (después,  del  año 2000):  Ingeniería ,genética para caracteres multigenicos, uso de plantas  transgénicas  para  la  producción  de metabolltos  secundarlos  (como bioreactores  naturales).

Bibliografia
  • http://www.mag.go.cr/congreso_agronomico_ix/A01-1277-69a.pdf

3.4.3 FUSIÓN DE PROTOPLASTOS









Bibliografia
  1. http://www.fagro.edu.uy/~fisveg/docencia/cursos%20posgrado%20y%20optativos/curso%20de%20micropropagacion/mateoricos/Cultivo%20de%20protoplastos.pdf 


3.4.2 VARIACIÓN SOMACLONAL



La variación somaclonal se ha descrito  como la  variabilidad  genética que se produce en las  plantas derivadas de cultivo in vitro  de células somáticas (Scowcroft  y Larkin, 1982). Esta variabilidad  genética tiene  dos orígenes:

 1. la variabilidad natural ya presente  en las células somáticas antes del cultivo
 2. la  variabilidad  in vitro  inducida por los métodos  de cultivo  (Sondahl et al.,  1984; Vasil, 1990).


Las células somáticas mutadas  son eliminadas mediante la reproducción sexual y no son transmitidas a la progenie (Vasil,  1990). Sin embargo,  estas células tienen la oportunidad de dividirse  y multiplicarse cuando son colocadas in  vitro,  obteniéndose decenas de células mutadas de las cuales se pueden regenerar plantulas completas. De esta manera  puede incrementarse  la  variabilidad,  especialmente  en aquellos cultivos  cuya reproducción es  casi exclusivamente asexual. La inclusión de una presión de selección en el  medio de cultivo,  por  ejemplo toxinas, letales  pesados, antimetabolitos, herbicidas y otros,  permitiria  seleccionar efectivamente aquellas células que tienen  capacidad de crecer en estos medios adversos 0  restrictivos  y  que, posiblemente, pudieran mostrar tolerancia a los factores simulados en el medio de cultivo (Vasil, 1990). La resistencia 0 tolerancia deberá comprobarse  en el  invernadero y  finalmente en el  campo. Este procedimiento ha sido  exitoso  para aquellos~  caracteres  controlados por genes simples (monogenicos). La selección  de mutantes con características  paronomasias deseables como tolerancia  a  la  sequía,  a  la  acidez  del  suelo  y  a  enfermedades fungosas y  bacterianas  ha sido mas difícil   debido a que estos  caracteres  están bajo  control  multigenico. 

Tiempo requerido  para  el  desarrollo  de nuevas variedades  mediante variación  somaclonal

Bibliografia
  1. http://www.mag.go.cr/congreso_agronomico_ix/A01-1277-69a.pdf



3.4 TECNICAS IN VITRO APLICADAS AL FITOMEJORAMIENTO


3.4.1 PRODUCCIÓN DE HAPLOIDES: CULTIVO DE ANTERAS Y ÓVULOS


Cultivo de anteras
Normalmente en la producción de haploides se trabaja con la antera en su totalidad, no con granos de polen en particular.  De una yema de flor se coge una antera antes de que se abra y se hace un cultivo; bien por embriogénesis u organogénesis.
Embriogénesis: se forman células (poliembriones).
Organogénesis: se forma una estructura de callo que puede venir o bien de tejidos de la antera (diploide), o bien del grano de polen (haploide).
Mediante esta técnica, las anteras inmaduras que contienen polen en una etapa específica de desarrollo se colocan en medios donde el polen inmaduro se divide para formar embriones o callos.  Transferidos estos a medios de regeneración, se forman plantas. En la mayoría de los casos se producen plantas haploides estériles, pero en algunas especies ocurre una duplicación espontanea de los cromosomas en las etapas de desarrollo del callo y regeneración de la planta.

Cultivo de óvulos
El cultivo de óvulos es una técnica que se ha empleado tradicionalmente para evitar barreras de incompatibilidad que dificultan algunos cruces inter e intraespecíficos, para eludir problemas de abscisión prematura del fruto, para la obtención de híbridos que presentan aborto del embrión en estadios tempranos del desarrollo, como vía alternativa a la androgénesis en la obtención de plantas haploides o como sistema experimental para el estudio de la respuesta in vitro de zigotos y proembriones.
 Los primeros intentos de aislar óvulos fecundados y cultivarlos en condiciones asépticas fueron llevados a cabo por White en 1932 con Antirrhinum majus; sin embargo, la técnica fue desarrollada y perfeccionada en el Departamento de Botánica de la Universidad de Delhi. Ya en 1960 Kanta desarrolló con éxito una técnica de polinización directa del ovario. Para ello, aisló un ovario inmaduro lo cultivó in vitro, lo perforó e introdujo en la cavidad ovarica polen sin germinar.

Kanta et al. (1962) intentaron llevar a cabo otras aproximaciones aislando directamente óvulos inmaduros para después polinizarlos in vitro y cultivarlos hasta la obtención de embriones maduros. Esta técnica, denominada test de fertilización o polinización ovular in vitro, se realizó por primera vez en Papaver somniferum y desde entonces ha sido aplicada satisfactoriamente a otras muchas especies. El cultivo de óvulos es un procedimiento complejo aconsejable sólo en los casos en los que sea estrictamente necesario, ya que el porcentaje de éxito es muy bajo y la manipulación del material es difícil. Esto se debe a que el óvulo es una estructura muy pequeña y delicada que requiere microcirugía para su aislamiento, resultando relativamente fácil dañarla. Además, al tratarse de un tejido altamente hidratado, no debe sufrir desecación durante su manipulación, que debe ser rápida y llevarse a cabo bajo una lupa estereoscópica provista de una fuente de luz fría. Es importante recordar que el aislamiento de los óvulos y del polen (en el caso de llevarse a cabo una polinización in vitro) debe hacerse en el estado fisiológico y morfológico correcto ya que de otra forma el proceso no tendría lugar. Por ello, debe hacerse un estudio de la duración de los distintos estadios del desarrollo de los órganos a aislar para saber cuándo se encuentran en el estadio adecuado para su cultivo.

El óvulo presenta una gran cantidad de requerimientos nutricionales, algunos no muy claros, que varían con el estadio del desarrollo del mismo y que es necesario poner a punto para cada especie a tratar. Hay que tener en cuenta que el medio no sólo debe ser satisfactorio para el desarrollo del óvulo sino también para otros procesos que como la germinación del polen, son necesarios para la fecundación y desarrollo del embrión. Todo ello complica aún más los requerimientos nutricionales y hace que se busquen, en la medida de lo posible, vías alternativas al cultivo de óvulos aislados.

                                                                    Cultivo de anteras   
                                                                   Cultivo de óvulos

Bibliografia
  • http://www.encuentros.uma.es/encuentros43/ovulos.html